Государственное
санитарно-эпидемиологическое
нормирование Российской Федерации
4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
Методы микробиологического измерения
концентрации клеток плесневого гриба
Penicillium verruculosum PV2007 ВКМ
F-3972D - продуцента комплекса
карбогидраз в воздухе рабочей зоны и
атмосферном воздухе населенных мест
Сборник методических указаний
по методам контроля
МУК
4.2.3032-12; 4.2.3033-12
Москва 2012
1. Разработаны ГБОУ ВПО «Российский национальный исследовательский
медицинский университет им Н.И. Пирогова» Минздрава России (д.б.н. Н.И. Шеина).
2. Методические указания одобрены и
рекомендованы секцией «Гигиенические аспекты биотехнологии и микробного
загрязнения окружающей среды» Проблемной комиссии «Научные основы гигиены
окружающей среды».
3. Утверждены и введены в действие Руководителем
Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия
человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г.
Онищенко 20 июля 2012 г.
4. Введены
впервые.
СОДЕРЖАНИЕ
1. Общие положения и область применения. 2
2. Биологическая характеристика плесневого гриба Penicillium verruculosum PV2007 ВКМ F-3972D
и его гигиенический норматив. 2
3. Пределы измерений. 3
4. Метод измерений. 3
5. Средства измерений, вспомогательные устройства,
реактивы и материалы.. 3
6. Требования безопасности. 4
7. Требования к квалификации операторов. 4
8. Условия измерений. 4
9. Проведение измерения. 4
10. Вычисление результатов измерения. 5
11. Оформление результатов измерений. 6
Список литературы.. 6
|
УТВЕРЖДАЮ
Руководитель Федеральной службы
по надзору в сфере защиты прав
потребителей и благополучия человека,
Главный государственный санитарный
врач Российской Федерации
Г.Г. Онищенко
20 июля 2012 г.
Дата введения: с момента утверждения
|
4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
Метод микробиологического измерения
концентрации
клеток плесневого гриба Penicillium verruculosum
PV2007 ВКМ F-3972D -
продуцента комплекса
карбогидраз в атмосферном воздухе населенных мест
Методические
указания
МУК 4.2.3033-12
1. Общие положения и
область применения
Настоящие методические указания
устанавливают методику проведения микробиологического количественного анализа
концентрации клеток штамма Penicillium verruculosum PV2007
ВКМ F-3972D - продуцента комплекса карбогидраз в атмосферном воздухе
населенных мест в диапазоне концентраций от 50 до 5000 клеток в 1 м3
воздуха.
Методические указания
разработаны с целью обеспечения микробиологического контроля штамма P. verruculosum PV2007
ВКМ F-3972D в атмосферном воздухе и оценки соответствия уровня его содержания
гигиеническим нормативам на основе учета требований ГОСТ
17.2.4.02-81 «Охрана природы. Атмосфера. Общие требования к методам
определения загрязняющих веществ» и ГОСТ
Р 8.563-96 «ГСИ. Методики выполнения измерений».
Методические указания
предназначены для применения в организациях Федеральной службы по надзору в
сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, а также в санитарных
лабораториях биотехнологических предприятий, микробиологических лабораториях
научно-исследовательских институтов, работающих в области гигиены окружающей
среды и аккредитованных в установленном порядке на право проведения
микробиологических исследований.
2. Биологическая
характеристика плесневого гриба Penicillium verruculosum PV2007 ВКМ F-3972D и его
гигиенический норматив
Штамм мицелиального гриба Penicillium verruculosum PV2007 ВКМ F-3972D
является продуцентом ряда карбогидраз (комплекса целлюлаз, целлобиаз и
сопутствующих ферментов - ксиланазы и ксилоглюканазы). Получен с помощью
методов многоступенчатого мутагенеза и селекции из исходной культуры P.
verruculosum 27K ВКМ
F-3764D. Депонирован во Всероссийской коллекции
микроорганизмов Института биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К.
Скрябина РАН под номером ВКМ F-3972D.
Растет на агаризованных
средах (среда Чапека с дрожжевым автолизатом, Мальц-агар, глюкозо-картофельный
агар, сусло-агар) при t 26 - 30 °С
в течение 7 - 10 суток, рН 4,5 - 5,0. При t 5 °С рост колоний не наблюдается.
На среде Чапека с дрожжевым
автолизатом колонии достигают 23 - 24 мм, поверхность сильно радиально
складчатая, плотная, тонкая, ростовая зона врастает в агар, имеет ширину 1,5 -
2,0 мм. Мицелий светло-желтоватый, шерстистый, центр колонии выпуклый,
конидиогенез слабый, серо-зеленоватого оттенка. Экссудата и растворимого
пигмента нет. Обратная сторона светлая, в центре колонии - палево-оранжевая.
При микроскопировании штамм
имеет конидиеносцы двухярусные, терминальные, бивертициллятные, гладкие длиной
около 150 мкм, шириной 2 - 3 мкм. Метулы расходящиеся размером 10 - 13 ´ 2,5 - 3,0 мкм, фиалиды амлуллиформные
размером 7 - 8 ´ 2,8 -
3,0 мкм. Конидии округлые, шероховатые размером 3,0 - 3,5 мкм.
3. Пределы измерений
Методика обеспечивает выполнение измерений
количества клеток плесневого гриба в атмосферном воздухе населенных мест в
диапазоне концентраций от 50 до 5000 клеток в 1 м3 воздуха при
доверительной вероятности 0,95.
4. Метод измерений
Метод основан на аспирации из воздуха
клеток плесневого гриба на поверхность плотной питательной среды и подсчета
выросших колоний по типичным культурально-морфологическим и
физиолого-биохимическим признакам.
5. Средства измерений,
вспомогательные устройства, реактивы и материалы
При выполнении измерений применяют
следующие средства измерений, вспомогательные устройства и материалы.
5.1. Средства измерений, вспомогательные
устройства, материалы
Импактор
микробиологический «Флора-100»
|
ТУ 9443-001-05031637-02
|
Прибор для
бактериологического анализа воздуха, модель 818 (щелевой прибор Кротова)
|
ТУ 64-12791-77
|
Прибор MAS-100 ECO фирмы Merk (Германия)
для отбора проб воздуха
|
|
Термостаты электрические
суховоздушные или водяные
|
|
Автоклав электрический
|
ГОСТ 9586-75
|
Бокс, оборудованный
бактерицидными лампами
|
|
Холодильник бытовой
|
|
Весы лабораторные
аналитические типа ВЛА-200
|
|
Микроскоп биологический с
иммерсионной системой типа «Биолам» Л-211
|
|
Лупа с увеличением ´10
|
ГОСТ 25706-83
|
Чашка Петри
бактериологические плоскодонные стеклянные диаметром 90 мм
|
ГОСТ 23932-90
|
Пробирки бактериологические
П1 и П2 вместимостью 15 и 20 мл
|
ГОСТ 25336-82
|
Пипетки мерные на 1, 5 и 10
мл
|
ГОСТ 10515-75
|
Пипетки мерные на 1, 5 и 10
мл
|
ГОСТ 1770-74
|
Колбы конические
вместимостью 250 и 500 мл
|
ГОСТ 1770-74
|
Секундомер
|
ГОСТ 9586-75
|
Барометр
|
ГОСТ 24696-79
|
Марля медицинская
|
ГОСТ 9412-77
|
Вата медицинская
гигроскопическая
|
ГОСТ 25556-81
|
5.2. Реактивы, растворы
Агар
микробиологический
|
ГОСТ 17206-84
|
D-Глюкоза (возможно заменить раствором
глюкозы для инъекций)
|
ГОСТ
6038-79
|
Вода дистиллированная
|
ГОСТ 6709-72
|
Спирт этиловый ректификат
|
ГОСТ 5962-67
|
Кислота молочная пищевая
(для подкисления среды и подавления посторонней бактериальной флоры)
|
ГОСТ 490-79
|
Глюкозо-картофельный агар,
г/л (очищенный картофель - 200, агар - 18 - 20, рН 4,5 - 5,0, режим
стерилизации 1,1 - 1,2 ати в течение 30 мин, глюкоза - 15 - 20 перед
использованием)
|
|
Среда Гетчинсона, г/л (КН2РО4
- 0,1; NaCl - 0,1; СаСl2
- 0,1; FeCl3 - 0,1; MgSO4´7Н2O - 0,3; NaNO3 - 2,5; агар - 2,0; дистиллированная
вода)
|
|
0,5 %-й водный раствор
карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ), вязкость m 10 мПас, t 25 °С, вискозиметр
Брукфильда LVF
|
|
0,1 %-й раствор Конго
Красного (congo
rot)
|
|
6. Требования
безопасности
При выполнении измерений
концентрации клеток штамма-продуцента в атмосферном воздухе соблюдают следующие
требования.
6.1.
Санитарные правила СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами».
6.2. ГОСТ 12.1.005-88 «Правила техники безопасности при работе с химическими
реактивами».
6.3. ГОСТ 12.1.019-79 «Электробезопасность при работе с электроустановками».
6.4.
Руководство «Положение об организации работы по технике безопасности в микробиологической
промышленности» (1980), «Инструкции по устройству, требованиям безопасности и
личной гигиены при работе в микробиологических лабораториях предприятий
микробиологической промышленности» (1977).
6.5. Все
виды работ с реактивами проводят только в вытяжном шкафу при работающей
вентиляции, работа с биологическим материалом осуществляется в боксе,
оборудованном бактерицидными лампами.
7. Требования к
квалификации операторов
К выполнению измерений и
обработке их результатов допускают лиц с высшим или средним специальным
образованием, прошедших соответствующую подготовку и имеющих навыки работы в
области микробиологических исследований.
8. Условия измерений
Процессы приготовления
растворов и подготовки проб к анализу проводят в нормальных условиях при
температуре воздуха (20 ± 5) °С, атмосферном давлении (760 ± 20) мм рт.ст. и
влажности воздуха не более 80 %.
9. Проведение
измерения
9.1. Условия отбора проб
воздуха
Для определения концентрации клеток
плесневого гриба воздух аспирируют при помощи одного из пробоотборников со
скоростью 10 - 100 л/мин на поверхность плотной питательной среды. Время
аспирации воздуха (5 - 20 мин) зависит от предполагаемой концентрации клеток
штамма-продуцента и вида пробоотборника.
Аппарат перед каждым отбором пробы воздуха
тщательно протирают спиртом. Особенно тщательно обрабатывают поверхность
подвижного диска и внутреннюю стенку прибора; наружную и внутреннюю стенку
крышки. На подвижной диск устанавливают подготовленную чашку Петри со средой,
одновременно снимая с нее крышку. Прибор закрывают. Соприкосновение крышки
прибора со средой недопустимо. После отбора пробы воздуха и остановки диска,
прибор открывают, быстро снимают чашку Петри и закрывают крышкой от данной
чашки. На дне чашки Петри стеклографом отмечают точку контроля, время аспирации
и дату отбора пробы.
9.2. Выполнение анализа
При выполнении анализа воздуха прямым
методом глюкозо-картофельный агар расплавляют, остужают до 50 - 60 °С, добавляют
глюкозу из расчета 15 - 20 г/л и молочную кислоту из расчета 2,0 мл на 500 мл
среды (для подкисления среды и подавления посторонней бактериальной
микрофлоры), тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри.
Чашки с застывшей средой помещают в
термостат на сутки при температуре 37 °С, после чего проросшие чашки бракуют,
стерильные чашки используют для контроля воздуха. После отбора проб воздуха
чашки Петри помещают в термостат на 29 °С. Через 4 - 7 суток производят подсчет
выросших колоний по культурально-морфологическим признакам и характерной
окраске колоний микромицета с обратной стороны чашки.
При выполнении
анализа воздуха дополнительным методом пробы воздуха отбирают на среду Гетчинсона
с добавлением 0,5 %-й
карбоксиметилцеллюлозы. Культивируют в термостате при t 28 °С в течение двух суток и проводят
окрашивание 0,1 %-м раствором Конго красным. Учет колоний штамма производится
по зонам просветления, образующимся в результате ферментации целлюлозы под
действием комплекса целлюлаз.
Ростовые свойства всех используемых
питательных сред должны быть проверены в соответствии с «Требованиями к
ростовым свойствам питательных сред» (Государственная Фармакопея СССР, год. XI, вып. 2, с. 208), что позволит более
полно оценить пределы ошибки метода. Для этого эталонный музейный
штамм-продуцент высевается на 2 - 3 чашки каждой используемой среды.
10. Вычисление
результатов измерения
Расчет концентрации клеток продуцента в
пересчете на 1 м3 воздуха производят по формуле:
где
Х - концентрация клеток продуцента в воздухе;
N - количество колоний продуцента, выросших на чашке;
1000 -
коэффициент пересчета на 1 м3 воздуха;
V - объем воздуха,
л (произведение скорости на время аспирации).
В случае невозможности использования аппарата Кротова,
рекомендуем применять метод седиментации клеток продуцента из воздуха
непосредственно на чашки Петри с плотной питательной средой. Время отбора проб воздуха
может составлять до 60 мин. При использовании этого метода пользуются следующим
расчетом концентрации клеток продуцента.
Эмпирически установлено, что за 5 мин на
площадь 100 см2 оседает количество бактерий, содержащееся в 10 л
воздуха, следовательно за 1 мин - количество бактерий из 2 л воздуха. Площадь
чашки Петри диаметром 100 мм равна 78,54 см2. Составляя пропорцию
определяем, что за 1 мин на стеклянную чашку Петри оседают клетки из 1,57
л/мин. Количество клеток в 1 м3 воздуха определяем по вышеприведенной
формуле, где V = 1,57 л/мин ´ t (время аспирации, мин).
Предлагаемый метод является
ориентировочным и может быть использован как вспомогательный метод.
11. Оформление
результатов измерений
Результаты измерений
оформляют протоколом по форме.
Протокол №
количественного микробиологического
анализа штамма P. verruculosum
PV2007 ВКМ F-3972D в
атмосферном воздухе населенных мест
1. Дата проведения
анализа___________________________________________________
|
2. Рабочее место (профессия работающего)_________________________________________
|
3. Место отбора пробы (название и адрес организации, производство,
технологическая стадия, точка отбора пробы)_________________________________________________________________
|
4. Вид пробоотборника_______________________________________________________
|
5. Дата последней метрологической
поверки оборудования для отбора проб _________
|
6. Питательная среда, время
инкубации_________________________________________
|
7. Количественная и качественная
характеристика выросших колоний (количество
типичных колоний, морфологические признаки, окраска по Грамму и др.)______________________
|
8. Результаты идентификации
микроорганизмов с указанием метода ________________
|
9. Результаты расчёта концентрации
штамма____________________________________
|
10. Соотношение полученных результатов с
уровнем ПДК ________________________
|
11. Отбор пробы произведён (Ф. И. О., должность, дата, подпись) _______________________
|
12. Идентификация штамма и расчёт
концентрации произведены (Ф. И. О.,
должность, дата, подпись)
____________________________________________________________________
|
Список литературы
1. РД 52.04.186-96
«Руководство по контролю загрязнения атмосферы». М., 1991, 693 с.
2. ГОСТ Р 8.563-96 «ГСИ. Методики выполнения измерений».
3. ГОСТ 17.2.4.02-81 «Охрана природы. Атмосфера. Общие требования к методам
определения загрязняющих веществ». М.: Изд-во стандартов, 1981, 3 с.